Koeploki mahu mõõtmine bioloogiliste mikroskoopide abil
Siiani on kudede ja rakkude röntgenmikroskoopia jaoks tavapärased meetodid krüofiksatsioon, külmutatud üli{0}}õhuke lõikamine ja külmkuivatus{1}}. Esitage selle meetodi kohta järgmised üksikasjad:
Prožektoriga bioloogiline mikroskoop suudab prožektorit üles-alla liigutada, et saavutada mõõdukat heledust, samuti saab muutuva ava ava muuta mõõduka heleduse saavutamiseks. Kui valgus tuleb päikesest, saab prožektorit sobivalt tõsta ja muutuva valguse ava vastavalt suurendada. Kui valgus on liiga tugev, saab prožektorit sobivalt langetada ja ristmiku ava vastavalt vähendada. Kui tunnete end selles olukorras endiselt pimestavalt, võite asetada prožektori all olevale kronsteinile sobiva filtri. See tamm võib saavutada teid rahuldava heleduse. Loomulikult võib prožektori ülemise ja alumise asendi reguleerimine muuta valguse näidu ava suurust ja valida sobivad filtrid, mis nõuab teatud perioodi harjutamist ja kogemusi.
Bioloogilise mikroskoopia väga oluline küsimus on proovide võtmise ja rakkude eraldamise protsess. Pärast külmutatud-kuivatamist ja vaigu manustamist (FD) tuleb külmutatud üliõhukesi sektsioone hoolikalt töödelda tagamaks, et iga osa 65 elemendi sisaldus ei saaks vaatluse ja analüüsi käigus kahjustada. Röntgenikiirte mikroanalüüsiga kaasnevate arvukate etappide ja kõrgete kulude tõttu on kahetsusväärne teha valesid järeldusi, kui analüüsitud rakud on pärast pikaajalist ja mitmeastmelist töötlemist kahjustatud või surnud. Želatinaastöötlusega eraldatud müokardirakud on kahes vormis: üks on pika pulgakujuline ja teine ringikujuline. Viimane viitab surevatele rakkudele, mis on kahjustatud rakkude eraldamise protsessis.
Elektrolüütide sisaldus ja jaotus nendes kahte tüüpi rakkudes on bioloogilise mikroskoobi all väga erinevad. Na on väga kõrge ja K on ümmargustes kardiomüotsüütides äärmiselt madal ning Ca kontsentratsioon lineaarsetes dendriitides on väga kõrge. Pärast kontrollimist teiste analüütiliste meetoditega on tõestatud, et kõrge Na ja madal K ringrakkudes ning kõrge Ca sisaldus mitokondrites on rakkude eraldumise ajal tekkinud membraanikahjustuse tagajärg. Rakkude ja kudede külmfikseerimismeetod hõlmab sageli esmalt nende kustutamist ja seejärel säilitamist vedelas lämmastikus. Kustutav fikseerimine on säilitusefekti jaoks ülioluline. Elusrakud või värsked koed on veerikkad ning jahutamisel külmutusagensiga (eriti vedela lämmastiku kasutamisel jahutamiseks) otseses kontaktis olevad rakkude või kudede osad sageli külmuvad ja fikseeritakse esmalt, moodustades "kesta", mis takistab rakkude keskosa purustamist ja fikseerimist. Seetõttu leitakse röntgenikiirte mikroanalüüsi tegemisel sageli, et jääkristallid eksisteerivad suuremate rakkude keskosas. Sellise olukorra vältimiseks kasutatakse külmutusagensina ainet, mille sulamistemperatuur on kõrgem kui vedel lämmastik, kuid madalam 806c võrra. Neid aineid on palju, kuid neid on lihtne hankida ja soodsaim on kontsentreeritud propaan (keemistemperatuur 42,120c, sulamistemperatuur 187,10c, molekulmass 44,1), millel on ka kiire jahutuskiirus. Kuid selle puuduseks on tuleohtlikkus.
