Bioloogiline mikroskoop koeploki mahu kohta
Kondensaatoriga bioloogiline mikroskoop võib liigutada kondensaatorit üles ja alla, et muuta selle heledus mõõdukaks, ning muuta ka muutuva valguse analüsaatori ava, et saavutada mõõdukas heledus 9b. Kui valgus on päikese käes, saab kondensaatorit sobivalt tõsta ja muutuva optilise müra ava vastavalt suurendada. Kui valgus on liiga tugev, saab kondensaatorit sobivalt alla lasta ja ristmiku ava vastavalt vähendada. Kui tunnete end sellisel juhul siiski pimestavalt, saate valida sobiva filtri ja asetada see kondensaatori all olevale kronsteinile. See tussah võib saada teid rahuldava heleduse. Loomulikult on vaja pärast teatud perioodi harjutamist omandada kogemusi kondensaatori ülemise ja alumise positsiooni reguleerimisel, et muuta optilise näidu ava suurust ja valida sobivad filtrid.
Biomikroskoobi väga oluline probleem seisneb selles, et igas osas on 65 elemendi sisaldus pärast külmkuivatamist ja vaigu manustamist (FD) ja külmkuivatamist hoolikalt käsitsetud, et mitte kahjustada vaadeldavaid ja analüüsitavaid rakke. Kuna röntgen-mikroanalüüs ei hõlma mitte ainult palju etappe, vaid ka maksab palju, on väga kahetsusväärne teha vale järeldus, kui analüüsitud rakud on pärast pikaajalist ja mitmeastmelist ravi kahjustatud rakud või surnud rakud. Näiteks kollagenaasraviga eraldatud müokardirakkudel on kaks vormi, üks on pikk varras ja teine ümar. Viimane on surev rakk, mis on rakkude eraldumise käigus kahjustatud.
Elektrolüütide sisaldus ja jaotus nendes kahte tüüpi rakkudes on bioloogilise mikroskoobi all väga erinevad. Ümarates müokardirakkudes on naatrium väga kõrge ja K väga madal ning lineaarsetes dendriitides on ca kontsentratsioon väga kõrge. Võrreldes teiste analüütiliste meetoditega on tõestatud, et kõrge Na ja madal K ringrakkudes ning kõrge ca mitokondrites on rakumembraani kahjustuse tulemus rakkude eraldamise ajal. Rakkude ja kudede külmfikseerimise meetod seisneb sageli nende fikseerimises esmalt karastamise teel ja seejärel vedelas lämmastikus. Kustutav fikseerimine on säilitusefekti jaoks väga oluline. Elusrakud või värsked koed on veerikkad. Karastamisel on sageli nii, et esmalt külmutatakse ja fikseeritakse need rakkude või kudede osad, mis on otseses kontaktis krüoprotektantidega (eriti vedela lämmastikuga kustutamisel), moodustades nii "kest", mis takistab tsentraalse külmumist ja fikseerimist. osa rakkudest. Seetõttu avastatakse röntgenikiirte mikroanalüüsi tehes sageli, et suuremate rakkude keskel on jääkristallid. Selle vältimiseks kasutatakse jahutusainena ainet, mille sulamistemperatuur on kõrgem kui vedelal lämmastikul, kuid mille kuivamistemperatuur on madalam kui 806c. Selliseid aineid on palju, kuid kõige hõlpsamini kättesaadav on kontsentreeritud propaan (keemistemperatuur-42．120c, sulamistemperatuur-187．10c, molekulmass-44.1), millel on kiireim jahutuskiirus. Kuid selle puuduseks on süttivus.
Bioloogiline mikroskoop võib asetada lihaskiu spetsiaalsele raamile ja kui lihaskiud tõmbub teatud faasi ja vajab fikseerimist, käivitatakse otsik kohe, nii et vedel propaan pihustatakse lihaskiule, et kustutada ja fikseerida. seda. Seejärel võetakse lihaskiud koos riiuliga välja ja asetatakse vedelasse lämmastikku. Kui vererakud või eraldatud rakud on fikseeritud, tsentrifuugige rakkude kontsentreerimiseks esmalt madalal kiirusel, viige rakud väikesesse hõbedasse, hea soojusjuhtivusega katsutisse ja asetage väike toru külmutamiseks ja fikseerimiseks vedelasse propaani. Halli laboris roti pankrease fikseerimisel eeljahutati kaks terasplokki vedela heeliumiga (või vedela lämmastikuga) ja kõhunäärme ette ja taha pandi tangidega kaks vaskplokki, nii et tädid karastati ja fikseeriti. Kudesid või rakke saab pärast kustutamist ja fikseerimist ning vedelasse lämmastikku ülekandmist pikka aega säilitada.
